7.如何檢測引物的純度？
答：實驗室方便的作法是用page方法,。使用加有7m尿素的16%的聚---凝膠進行電泳。取0.2-0.5od的引物,，用尿素飽和液溶解或引物溶液中加入尿素干粉直到飽和，上樣前加熱變性(95℃,，2mins),。加入尿素的目的一是變性，二是增加樣品比重,，容易加樣,。600v電壓進行電泳，一定時間后(約2-3小時),，剝膠,，用熒光tlc板在紫外燈下檢測帶型,，在主帶之下沒有雜帶,，說明純度是好的。如果條件許可,，也可以用eb 染色或銀染方式染色,。
而有的廠家提供maldi-tof質(zhì)譜qc控制，從而保障了合成的準確率：
bioneer使用多重maldi-tof質(zhì)譜儀進行全自動裝載及監(jiān)測,。 每份樣品的質(zhì)譜分析數(shù)據(jù)將自動插入到寡核苷酸的信息單中,。bioneer是上僅有的幾個對生產(chǎn)的每份核苷酸 (單個寡核苷酸和高通量和成) 都用maldi-tof質(zhì)譜儀檢測進行核苷酸qc檢測的廠商，云南pcr,，而且免費提供質(zhì)譜數(shù)據(jù),。
8.如何計算引物的濃度？
答：引物保存在高濃度的狀況下比較穩(wěn)定,。引物一般配制成10-50pmol/ul,。 一般情況下，建議將引物的濃度配制成50pmol/ul,，加水的體積微升按下列方式計算：v (微升)= od數(shù)*乘33 *乘*乘20000 / (除) 引物的分子量,。引物的分子量可以從合成報告單上獲得。如果需要配制成其他濃度,，---,，按上述公式換算。
注意：1 od260= 33 ug/ml.
3,、參數(shù)設(shè)置
使用488nm激發(fā)波長,，525nm發(fā)射波長，實時或逐時間點檢測---前后熒光的強弱,。dcf的熒光光譜和fitc非常相似,，可以用fitc的參數(shù)設(shè)置檢測dcf,。dcf的激發(fā)光譜和發(fā)射光譜參考下圖。
4,、其它說明
陽性對照可以按照1：1000的比例使用,。例如裝載好探針的細胞共1毫升，可以加入1微升的陽性對照---,。通常---后20-30分鐘內(nèi)可以觀察到非常---的活性氧水平升高,。對于不同的細胞，活性氧陽性對照的效果可能有較大的差別,。如果在---后30分鐘內(nèi)觀察不到活性氧的升高,，可以適當提高活性氧陽性對照的濃度。如果活性氧升高得過快,，可以適當降低活性氧陽性對照的濃度,。
另外，對于某些細胞,，如果發(fā)現(xiàn)沒有---的陰性對照細胞熒光也比較強,，可以按照1：2000-1：5000稀釋dcfh-da，---怎么做,，使裝載探針時dcfh-da的濃度為2-5微摩爾/升,。探針裝載的時間也可以根據(jù)情況在15-60分鐘內(nèi)適當進行調(diào)整。
southern雜交
實驗原理
southern印跡雜交southern blot是1975年由英---southern創(chuàng)建,，實時熒光定量pcr,，是研究dna圖譜的基本技術(shù)。southern印跡雜交是進行基因組dna特定序列定位的通用方法,。一般利用瓊脂糖凝膠電泳分離經(jīng)---性內(nèi)切酶---的dnal片段,，將膠上的dna變性并在原位將單鏈dnal片段轉(zhuǎn)移至尼龍膜或其他固相支持物上，經(jīng)干烤或者紫外線照射固定,，再與相對應(yīng)結(jié)構(gòu)的標記探針進行雜交,，用放l射自顯影或酶反應(yīng)顯色，從而檢測特定dna分子的含量,。
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